Prestazioni diagnostiche di Strongyloides
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Prestazioni diagnostiche di Strongyloides

Aug 07, 2023

Parassiti e vettori volume 16, numero articolo: 298 (2023) Citare questo articolo

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Il rilevamento delle IgG parassita-specifiche nelle urine è un metodo sensibile per la diagnosi della strongiloidosi e fornisce un'accuratezza simile alle IgG sieriche. Tuttavia, non esistono dati riguardanti il ​​rilevamento della sottoclasse IgG nelle urine. Per esplorare ulteriormente l'utilità della diagnosi dai campioni di urina, abbiamo valutato la prestazione diagnostica delle IgG4 nelle urine rispetto ai metodi parassitologici e ad altri metodi immunologici.

L'urina e il siero includevano strongiloidosi accertata (gruppo 1, n = 93), altre infezioni parassitarie (gruppo 2, n = 40) e parassiti negativi (gruppo 3, n = 93). È stata valutata la prestazione delle IgG4 specifiche per Strongyloides nelle urine per la diagnosi di strongiloidosi utilizzando l'esame fecale come standard di riferimento.

Con l'esame fecale come gold standard, le IgG4 specifiche per Strongyloides nelle urine avevano una sensibilità del 91,4% e una specificità del 93,2% mentre le IgG4 sieriche avevano una sensibilità del 93,6% e una specificità del 91,0%. Le IgG4 sia nelle urine che nel siero avevano concordanze diagnostiche quasi perfette con l'esame fecale (il coefficiente kappa di Cohen era > 0,8). Reattività crociata con Opisthorchis viverrini e Taenia spp. di IgG4 nelle urine erano del 7,5% e del 12,5% nel siero. Analisi concomitanti delle IgG totali nelle urine e nel siero hanno mostrato che la sensibilità (97,9–100%) e la specificità (88,7–91,0%) erano simili (P > 0,05). La sensibilità per l'esame parassitologico mediante la tecnica di concentrazione di formalina-etile acetato (FECT) era del 49,5% e quella per la tecnica di coltura su piastra di agar (APC) era del 92,6%.

I nostri risultati hanno mostrato che il rilevamento specifico di IgG4 nelle urine ha prodotto prestazioni diagnostiche simili a quelle degli stessi biomarcatori nel siero. Ciò suggerisce che una diagnosi accurata di strongiloidosi può essere eseguita utilizzando campioni di urina e che le IgG4 rappresentano una valida scelta come marcatore diagnostico. Sono necessarie ulteriori valutazioni per valutare l’utilità delle IgG4 nelle urine per misurare la risposta al trattamento nella strongiloidosi.

La strongiloidosi è una malattia tropicale trascurata (NTD) causata dall'infezione dal nematode Strongyloides stercoralis. La trasmissione del parassita avviene a livello globale nelle regioni tropicali e subtropicali [1, 2]. Nel sud-est asiatico, infezioni da S. stercoralis nell’uomo sono state segnalate in Tailandia, Laos, Vietnam e Cambogia [1,2,3,4]. Esiste il rischio di autoinfezione quando si sviluppano larve filariformi di S. stercoralis che reinfettano lo stesso ospite, portando a un'infezione permanente. La strongiloidosi è normalmente asintomatica ma occasionalmente presenta manifestazioni che includono sintomi gastrointestinali e dermatologici; nei casi in cui l’immunità dell’ospite è compromessa, possono verificarsi iperinfezione e strongiloidosi disseminata fatale [5,6,7].

Una diagnosi sensibile e specifica dell'infezione da S. stercoralis è necessaria per l'inizio del trattamento per prevenire le complicanze della malattia e per migliorare la sorveglianza e il controllo della strongiloidosi. Gli esami fecali, come la coltura su piastra di agar (APC) e la tecnica di Baermann, sono considerati metodi diagnostici “gold standard” per l'infezione da S. stercoralis. Tuttavia, entrambi hanno una bassa sensibilità a causa della densità spesso bassa delle larve e dell'elevata fluttuazione giornaliera della produzione delle larve nelle feci. Si raccomanda un esame fecale ripetuto per migliorare la sensibilità, ma può essere logisticamente difficile per i pazienti e il personale di laboratorio [8, 9]. Per alleviare la bassa sensibilità, sono stati sviluppati diversi metodi diagnostici alternativi, per lo più utilizzando metodi immunologici come il rilevamento di antigeni o anticorpi nel siero, nella saliva e nelle urine [10,11,12,13]. Sono stati utilizzati anche metodi molecolari per rilevare il DNA di S. stercoralis con sensibilità variabile nei campioni fecali (75-100%) e di urina (77,1%) e specificità (67,8% nelle urine e 80-90% nelle feci) [14, 15] . Per i metodi molecolari sono necessari reagenti costosi e strutture specializzate. Pertanto, nei paesi in cui le risorse sono limitate e la strongiloidosi è prevalente, è essenziale sviluppare metodi più convenienti ed economici [14,15,16].

 0.80 is almost a perfect agreement [30, 31]. The statistical analyses on data obtained in this study were done using SPSS v.26.0. The results of statistical tests were considered significant when P < 0.05./p> 0.05). For specific IgG in serum and urine, detection of S. stercoralis infection was 100% and 97.8%, respectively, and these were similar (McNemar test, \(\chi\)2 = 2.022, df = 1, P > 0.05). In the analysis of samples from people with other parasitic infections (Group 2), the positive rates by IgG4 in urine and serum were similar (7.5–12.5%) (McNemar test, \(\chi\)2 = 1.287, df = 1, P > 0.05), and those of IgG in urine and serum (10.0–12.5%) (McNemar test, \(\chi\)2 = 0.635, df = 1, P > 0.05), but these were not significantly different. In parasite-negative individuals (Group 3, Additional file 1: Table S1), the detection rates of IgG4 were 6.5% in urine and 7.5% in serum (McNemar test, \(\chi\)2 = 21.8, df = 1, P > 0.05). For IgG detection, the positive rates were 11.8% in urine and 7.5% in serum (McNemar test, \(\chi\)2 = 49.3, df = 1, P > 0.05)./p> 0.05). Similar positive rates were also observed for IgG in urine (46.9%) and serum (46.5%) (McNemar test, \(\chi\)2 = 169.8, df = 1, P > 0.05). When considering the different types of immunoglobulins used to test the same clinical specimens, IgG returned higher positive rates than IgG4 in urine samples (McNemar test, \(\chi\)2 = 160.95, df = 1, P < 0.01)./p> 0.05). For specific IgG in urine and serum, the sensitivities were similar (97.9–100%). The specificity of specific IgG in serum was 91.0% and that in urine was 88.7% (McNemar test, \(\chi\)2 = 29.2, df = 1, P > 0.05). The sensitivity of FECT was 49.5% and 92.6% for APC./p> 0.05). The AUCs of IgG in urine (AUC = 0.933, 95% CI 0.897–0.969) and in serum (AUC = 0.955, 95% CI 0.926–0.984) were also similar (DeLong’s test, P > 0.05)./p>